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Q: 制备抗体时,对抗原 / 多肽送样有哪些关键要求?
A: 蛋白抗原:分子量>10 kDa、纯度≥85%、浓度 0.5–5 mg/mL,无叠氮钠 / 咪唑等杂质,甘油<20%,附SDS-PAGE/WB 鉴定图。多肽抗原:偶联载体需总量>6 mg、纯度≥80%;未偶联需总量>10 mg、纯度≥90%,均需提供序列与鉴定报告。
Q: 抗体在敲除 / 突变体样本中仍有信号,是什么原因?
A: 常见原因有 4 点:①抗体识别同源蛋白表位(同家族蛋白共享表位);②突变体构建未成功(未敲除目标表位);③样本存在污染或代偿表达;④识别截短 / 突变前表位。建议提供测序验证报告与突变位点信息,结合阳性 / 阴性对照复测。
Q: IHC 实验无信号 / 信号弱,可能原因?
A: 核心原因:抗原修复不足、抗体浓度低 / 孵育短、样本固定过度、抗原丢失、抗体不识别石蜡切片。解决:优化抗原修复(HIER 高温修复)、提高一抗浓度 / 4℃过夜、控制固定时间、用经验证的 IHC 抗体。
Q: WB 实验背景高、非特异条带多,常见原因与解决办法?
A: 常见原因:一抗 / 二抗浓度过高、封闭不足、孵育时间过长、洗涤不充分、样品降解。解决:降低抗体浓度、延长封闭(5% 脱脂奶 / BSA,1–2 h)、缩短孵育、增加洗涤次数、加蛋白酶抑制剂。
Q: 抗体出现沉淀 / 聚集还能用吗?怎么处理?
A: 轻微沉淀 / 聚集不影响活性。处理:室温轻柔颠倒混匀;或4℃离心(1000×g,5 min)取上清,过滤(0.22 μm)也可,不影响核心活性。避免剧烈震荡或反复冻融。
Q: 抗体正确保存条件是什么?需要分装吗?有效期多久?
A: 含 50% 甘油抗体:-20℃避光保存,勿冻融,无需分装(防污染 / 效价损失);无甘油(PBS 体系):-80℃保存,建议无菌分装避免反复冻融。有效期:原装未开封 1 年(质保),妥善保存可稳定≥5 年。
Q: 抗体浓度越高效果越好吗?浓度低会影响结果吗?
A: 不是。抗体按免疫活性效价配比,非浓度越高越好。只要在说明书推荐稀释比(如 WB:0.1–1 μg/mL)内,低浓度高活性抗体效果更优;浓度过高易导致非特异性结合、背景高。
Q: 抗体标注分子量与 WB 实际条带不一致,正常吗?
A: 正常。常见原因:①翻译后修饰(磷酸化、糖基化等增加分子量);②剪接变体 / 同工型;③蛋白多聚体 / 降解;④凝胶迁移或电荷差异。建议参考说明书预期条带,结合文献与阳性对照验证。
Q: 同一靶点有多个货号 / 克隆号,核心差异是什么?
A: 核心差异是免疫原、表位、宿主、验证应用与批次稳定性。克隆号代表单抗的独特细胞株,同克隆号 = 同抗体;不同克隆号识别不同表位,适用实验(如 WB/IHC)与性能(特异性 / 灵敏度)可能不同。
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