实验原理/Experimental principle
本产品基于SDS-PAGE电泳中蛋白质在电场作用下按分子量大小分离的基本原理。SDS可与蛋白质结合，使其带上大量负电荷并展开为棒状构象，消除蛋白质原有的电荷差异和形状差异，使电泳迁移率仅取决于分子量大小。本产品采用MOPS作为尾随离子，替代传统的甘氨酸，与Bis-Tris凝胶体系中的氯离子形成离子迁移梯度。Bis-Tris凝胶的中性pH环境（pH 7.0）可有效减少蛋白质在碱性条件下的修饰和降解，特别适合用于磷酸化蛋白等翻译后修饰分析。
技术流程/Procedure
一、配制1×工作液
取一包速溶颗粒，倒入洁净的烧杯或量筒中，加入约800 mL去离子水，置于磁力搅拌器上搅拌或手动搅拌至颗粒完全溶解。将溶液转移至容量瓶中，用去离子水补足至1000 mL（1L），轻轻颠倒混匀。若一次不需使用全部工作液，可按比例分装颗粒后配制。
二、安装电泳装置
将配制好的1×电泳缓冲液倒入垂直电泳槽的内槽和外槽，内槽缓冲液需完全覆盖加样孔，外槽液面应高于内槽底部电极。确认装置无漏液后，小心拔出凝胶梳子。（注意：Bis-Tris体系阳极和阴极使用相同缓冲液，无需区分）
三、上样
将已变性的蛋白样品及预染Marker加入凝胶加样孔中，根据加样孔容量通常上样10-30 μL。注意避免移液器尖端刺破凝胶或其他加样孔。使用Bis-Tris凝胶时，建议使用配套的样品缓冲液（中性pH）以获得最佳分离效果。
四、电泳
盖好电泳槽上盖，连接电泳仪电源。建议电泳条件：恒压150-200V，总电泳时间约30-40分钟。待溴酚蓝指示剂到达凝胶底部时结束电泳。注意：Bis-Tris/MOPS体系产热较低，通常无需冰浴，可直接在室温下运行。
五、后续检测
电泳结束后关闭电源，取出凝胶，切除浓缩胶。根据实验目的进行考马斯亮蓝染色、银染或Western Blot印迹检测。由于Bis-Tris体系对修饰蛋白的保护作用，特别推荐用于磷酸化蛋白、糖基化蛋白等翻译后修饰的Western Blot分析。
产品优势/Highlights
✪ 速融便捷
即取即用，可快速配制成工作液，无需称量、无需调节pH，省时省力；
✪ 体系优化
专为Bis-Tris凝胶体系设计，MOPS缓冲配方有效维持中性pH环境，蛋白条带锐利、分辨率高；
✪ 稳定可靠
颗粒形式避免液体试剂运输泄漏及长期储存变质问题，批次间稳定性高，结果重复性好。